間充質細胞（MesenchymalStemCells，簡稱MSC）是一類具有多向分化潛能的干細胞，廣泛存在于多種組織中，如骨髓、脂肪、臍帶、牙髓等。由于其分化潛能強、免疫調節功能顯著，間充質干細胞在組織工程、再生醫學、免疫治療等領域有著廣泛的應用。
操作細則涉及間充質細胞的分離、培養、鑒定、擴增及儲存等環節。以下是操作過程中常見的步驟和注意事項。
一、間充質細胞的分離
組織取樣
常見的組織來源包括骨髓、脂肪、臍帶、牙髓等。選擇適當的組織并進行消毒，避免污染。
取樣時需注意無菌操作，避免外源性污染。
組織消化
使用酶（如膠原酶、胰蛋白酶）對組織進行消化，分解組織基質，使細胞能夠脫落。
消化過程通常控制在37°C下進行，時間一般為30分鐘至1小時，具體根據組織類型和酶的種類來調整。
必須注意酶的濃度、消化時間以及溫度，避免細胞損傷。
細胞收集
消化完成后，加入培養基停止酶的活性，經過離心收集細胞。
使用細胞篩（一般為70μm篩網）過濾，去除未完全消化的組織塊。
細胞洗滌
通過離心洗滌細胞3次，去除血液成分、死細胞及殘留的酶。
洗滌后用適當的培養基重懸細胞，調節細胞濃度。
細胞培養
將細胞接種到培養瓶中，加入含有10%-20%胎牛血清（FBS）和其他生長因子的培養基，培養在37°C、5%CO?的恒溫培養箱中。
二、間充質細胞的培養
培養基選擇
常用的培養基為DMEM（低葡萄糖）或α-MEM等，添加10%-20%FBS和1%青鏈霉素（抗生素）作為標準培養基。
為提高細胞生長，可能還需要添加一些特定的生長因子，如表皮生長因子（EGF）、基本成纖維生長因子（bFGF）等。
細胞培養條件
培養溫度：37°C。
CO?濃度：5%。
相對濕度：大約95%。
細胞傳代
間充質細胞通常在80%-90%融合時進行傳代。
傳代時，使用0.25%胰蛋白酶-EDTA消化細胞，避免長時間消化。
細胞處理后，離心收集并重懸，接種至新的培養瓶中，按照適當的細胞密度分配。
細胞密度與培養瓶
一般建議的接種密度為5000-10000個細胞/cm²。
傳代時，保持細胞在適當的接種密度范圍內，以免細胞因過度密集而相互抑制生長。
細胞狀態監控
定期觀察細胞形態，健康的間充質細胞通常呈現梭形或紡錘形。
細胞培養基需定期更換（一般為每2-3天），保持細胞生長的最佳環境。
三、間充質細胞的鑒定
形態學鑒定
間充質細胞在培養時呈梭形、長條狀，形成單層、較為均一的細胞層。
表面標志物檢測
采用流式細胞儀檢測細胞表面標志物，通過免疫熒光法或抗體染色法檢測MSC的特異性表面標志物。
常見的標志物：
陽性標志物：CD73、CD90、CD105。
陰性標志物：CD34、CD45、CD14。
分化潛能檢測
間充質細胞具有分化成骨細胞、軟骨細胞和脂肪細胞的潛能，常通過誘導分化實驗來檢測。
骨分化：通過ALP（堿性磷酸酶）、鈣鹽沉積染色（如茜素紅染色）檢測。
軟骨分化：通過突觸蛋白染色、甲硫氨酸染色等方法檢測。
脂肪分化：使用油紅O染色檢測脂肪小滴。
基因表達檢測
PCR、RT-PCR等方法檢測MSC相關基因的表達，如Osterix、Runx2、PPAR-γ等基因。
四、間充質細胞的凍存與復蘇
凍存
細胞在傳代后需進行凍存時，加入適量的凍存液（通常為10%-20%DMSO）和10%-20%FBS，混合后將細胞分裝入凍存管。
凍存時，先在-80°C的冰箱中緩慢降溫，12小時后轉入液氮罐儲存。
復蘇
取出凍存管，快速將細胞復蘇于37°C水浴中，盡量減少復蘇時間。
復蘇后，立即將細胞接種到含有培養基的培養瓶中，避免細胞受到高濃度DMSO的傷害。
細胞復蘇后需要密切觀察，若細胞恢復良好，則可以按常規方式進行培養。
五、常見注意事項
無菌操作：所有操作應在無菌條件下進行，尤其是細胞分離、培養、傳代等過程，避免細菌、真菌等污染。
細胞密度控制：過高或過低的細胞密度都會影響細胞生長，因此在傳代時需要保持適宜的接種密度。
細胞監測：定期檢查細胞生長狀況，及時更換培養基，并觀察細胞是否有污染或病變跡象。
凍存操作謹慎：凍存液濃度不當或凍存操作不當可能導致細胞死亡，因此操作時要小心，確保細胞存活率。
通過以上操作細則，可以確保間充質細胞的高效分離、健康培養和可靠鑒定，為后續的研究和臨床應用奠定基礎。
