CD34+造血干細胞是血液系統中的關鍵細胞，具有自我更新和多向分化潛能。通過轉染技術，可以研究基因功能并開發新的治療策略。ProteanFect Max作為一種高效的轉染試劑，已被證明能顯著提高mRNA轉染效率，且對細胞分化影響較小。
2. 材料與方法
2.1 CD34+造血干細胞的分選
使用動員人單采血或臍帶血，通過陽性選擇分選試劑盒分離CD34+細胞。推薦使用Lymphoprep™（Stemcell, 07861）作為分離試劑，以及CD34 MicroBead Kit, human（Miltenyi Biotec, 130-046-702）進行細胞分選。
2.2 培養基的配制
SFEM II培養基（Stemcell, 09655）和StemSpan™ CC100（Stemcell, 02690）以99:1比例混合。
若添加抗生素，需稀釋1000倍。
配制完成后，培養基應放置于4°C冰箱儲存，并盡量在1個月內使用完。
2.3 細胞培養與傳代
分選后的CD34+細胞以300g離心5分鐘，用1 mL完·全培養基重懸后計數。
根據計數結果，將細胞重懸至105 cells/mL的密度，接種到T25培養瓶或細胞培養板中。
3天后補液一次，若進行轉染實驗，需調整細胞密度至2×105 cells/mL，并隔天補液。
2.4 轉染操作
轉染核酸：mRNA。
轉染培養基：使用Opti-MEM培養基或無血清RPMI 1640/無血清DMEM培養基。
轉染體系：配置ProteanFect Max轉染體系，具體protocol需參考私戳獲取。
細胞準備：確保細胞活率超過90%，避免反復離心。
轉染過程：孵育時間建議15分鐘，適當延長可提高轉染率，但可能影響細胞活力。
效率檢測：使用陽性對照mRNA，轉染后5-48小時內觀察EGFP表達。細胞活率可通過鏡下觀察、臺盼藍、AO/PI染色或流式細胞術檢測。
3. 結果
使用ProteanFect Max轉染的CD34+造血干細胞顯示出高達72.3%的mCherry+表達率，而未處理組僅為0.25%。此外，轉染后細胞的分化狀態未受顯著影響，CD71+CD235-細胞比例在轉染后第2天和第3天保持穩定。
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